检索结果-南通市图书馆

真菌学报 1996年第4期15卷 304-305页

作者：高仁恒雷丽萍刘杏忠山西师范大学生物系临汾041004 云南省烟草科学研究所中国农业科学院生物防治研究所北京100081

捕食器官是捕食线虫真菌分类鉴定和生防应用的重要依据,常规鉴定捕食线虫真菌的方法是在原始分离培养中直接观察和测量捕食器官和孢子,如果没在捕食器官或缺少其他特征不能鉴定时,只有挑取孢子到营养培养基上获得纯培养后再进一步鉴定。

关键词：捕食线虫真菌捕食器官生物防治

调控寡孢节丛孢捕食器官形成的lncRNAs及其潜在靶基因研究

在线全文

学校读者我要写书评

暂无评论

调控寡孢节丛孢捕食器官形成的lncRNAs及其潜在靶基因研究

作者：曾海愿云南大学

学位级别：硕士

寡孢节丛孢(Arthrobotrys oligospora)在秀丽隐杆线虫的诱导下,能产生捕食器官(三维菌网)捕捉线虫,生活模式也由此从腐生转变为寄生。目前,人们对于其捕食器官产生的分子机制有了一定的了解,但对于lncRNAs在捕食器官形成过程中的作用仍... 详细信息

寡孢节丛孢(Arthrobotrys oligospora)在秀丽隐杆线虫的诱导下,能产生捕食器官(三维菌网)捕捉线虫,生活模式也由此从腐生转变为寄生。目前,人们对于其捕食器官产生的分子机制有了一定的了解,但对于lncRNAs在捕食器官形成过程中的作用仍然知之甚少。基于此,本研究选取在寡孢节丛孢捕食器官形成关键节点中有差异表达的lncRNAs及其潜在靶基因进行功能研究,期望从RNA水平探究寡孢节丛孢捕食器官形成的分子机制。首先,利用同源重组的方法对在捕食器官形成过程中具有差异表达的lncRNAs-TCONS0316346及其邻近基因AOL00193g129进行敲除,表型对比实验发现ΔTCONS0316346和ΔAOL00193g129产捕食器官的数量与野生型菌株相比显著减少,提示它们可能参与了捕食器官的形成。RT-PCR结果显示,TCONS0316346敲除后,AOL00193g129的表达量明显上调,提示它们之间可能存在一定的相互作用。鉴于AOL00193g129是一个bZIP转录调控因子,其可对下游的靶基因进行调控,因此,本研究进一步对敲除菌株进行了转录组高通量测序,并通过生物信息学分析预测了可能受lncRNAs-TCONS0316346及转录调控因子AOL00193g129共同调控的下游靶标基因,GO分析提示这些基因主要集中在新陈代谢过程、细胞膜成分和催化活性上,本研究为今后进一步深入研究lncRNAs-TCONS 00316346与转录调控因子AOL00193g129的相互作用机制奠定了基础。鉴于部分lncRNAs能作为竞争性内源RNA(ceRNA)吸附milRNA从而调控功能基因的表达。而通过生物信息学预测发现lncRNA-LNC00315和功能基因AOL00215g45的3’-UTR序列上具有相同的milRNA结合位点,且lncRNA-LNC00829和功能基因AOL00210g77的3’-UTR序列上也具有相同milRNA结合位点。而RT-PCR结果显示lncRNA和功能基因在捕食器官形成过程中具有相同的表达趋势,且表达趋势与milRNA相反,推测这些lncRNAs可能与milRNA相互作用从而调控功能基因的表达。因此,本研究选取LNC00315、LNC00829、AOL00215g45、AOL00210g77进一步开展其功能研究。敲除LNC00315和AOL00215g45后,表型分析发现在ΔLNC00315中生长速率及抗逆无明显变化,但产孢数量、杀线虫活性和产捕食器官数量明显减少,但在ΔAOL00215g45中,生长速率及抗逆性、产孢数量、杀线虫活性和产捕食器官数量均无明显变化。双荧光素酶报告基因实验分析并未进一步证实LNC00315和AOL00215g45的3’-UTR与milRNA505、milRNA544之间是否存在相互作用。此外,敲除LNC00829后,表型分析发现在ΔLNC00829中生长速率及抗逆性无明显变化,但产孢数量、杀线虫活性和产捕食器官数量明显减少,提示其在捕食器官形成过程中具有重要作用。但遗憾的是,本研究并未获得AOL00210g77的敲除菌株,且双荧光素酶报告基因实验并未证实AOL00210g77的3’-UTR序列与milRNA存在明显的相互作用。因此,虽然本研究初步证实LNC 000315和LNC00829在捕食器官形成过程中可能具有重要的作用,但其是否确实通过与milRNA形成内源性竞争RNA来调控功能基因,从而参与捕食器官的形成还有待进一步研究。本论文的创新性:本研究利用分子生物学手段对在捕食器官形成过程中可能发挥调控作用的lncRNAs及其靶基因开展研究,从非编码RNA调控的角度理解捕食线虫真菌捕食器官形成的分子机制。

关键词：寡孢节丛孢 lncRNAs milRNA ceRNA 同源重组捕食器官

在线全文

同方学位论文库

学校读者我要写书评

暂无评论

细菌诱导少孢节丛孢捕食器官形成的初步研究

细菌诱导少孢节丛孢捕食器官形成的初步研究

作者：郑桥妹云南大学

学位级别：硕士

植物寄生线虫引起的病害一直都是农业生产中的主要病害之一,对许多具有重要经济价值的作物造成严重损失。随着化学防治弊端的不断显现,生物防治资源探寻越来越受到重视。作为线虫天敌的捕食线虫真菌,是生物防治植物寄生线虫的主要选择,... 详细信息

植物寄生线虫引起的病害一直都是农业生产中的主要病害之一,对许多具有重要经济价值的作物造成严重损失。随着化学防治弊端的不断显现,生物防治资源探寻越来越受到重视。作为线虫天敌的捕食线虫真菌,是生物防治植物寄生线虫的主要选择,捕食器官是捕食线虫真菌的主要武器,其形成与否和数量多少对捕食线虫真菌捕杀线虫能力起决定性作用。因此挖掘捕食线虫真菌形成捕食器官的促进因子很关键。近年来越来越多研究表明细菌和细菌的代谢产物在捕食线虫真菌捕食器官形成中扮演着重要角色。在土壤中细菌-真菌-线虫共享微环境,进化出许多相互协调和控制的机制维持生态平衡。本论文对98株细菌进行了16SrDNA鉴定,它们分别属于Pseudomonas、Pseudochrobactrum、Brevibacterium、Microbacterium、Ochrobactrum、Plantibacter、Cronobacter、Delftiasp、Enterobacter、Herbiconiux、Sphingobacterium、Acinetobacter、Bacillus和Escherichia。同时对它们诱导少孢节丛孢（Arthrobotrys oligospora）捕食器官形成活性进行筛选,结果表明33株细菌具有诱导活性。在筛选获得的活性菌株中,7株鉴定为浅黄色假单孢杆菌（Pseudomonas lurida）的菌株都具有较强的诱导活性,这是首次报道该种细菌具有诱导捕食器官形成活性。选取其中一株Pseudomonas lurida C38进行捕食器官诱导广谱性筛选,结果表明该菌株的发酵液可以诱导三维菌网、粘性分支、收缩环和粘球捕食器官形成。对该菌的培养条件进行优化,选取LB培养基进行发酵,从发酵物的乙酸乙酯相和正丁醇相萃取物中分离到10个化合物,鉴定了7个:nicotinic acid（mb-1）、cyclo-L-Tyr-L-Pro（mb-3）、3-phenylpropanoic acid（ma-10）、4-hydroxy-benzeneacetic acid methyl ester（mw-1）、4-hydroxy-benzeneacetic acid（ma-13）、L-tryptophan（ma-3）和2-amino-naphthalene（ma-18）,其中L-tryptophan具有诱导活性。通过GC-MS检测,该菌产生的主要挥发性化合物是:3,5-bis（1,1-dimethylethyl）-phenol、cyclotetradecane、1-octadecanol、1-nonadecene、11-hexadecenoic acid methyl ester、hexadecanoic acid methyl ester、14-methyl-,pentadecanoic acid methyl ester、dibutylphthalate、N-hexadecanoicacid、3-benzylpyrrolopiperazine-1,4-dione、dihydro-5-（hydroxymethyl）-2（3H）-furanone、eicosane、1-decene、cyclopropane,nonyl-、1-tetradecanol、decane,5,6-dipropyl-、E-14-Hexadecenal、1-hexadecene、1-hexadecanol、Z-7-hexadecenoic acid、S,S-dioxide4-n-hexylthiane、（9E,12E）-octadecadienoic acid methyl ester、9-octadecenoic acid methyl ester、13-octadecenoic acid methyl ester、octadec-9-enoic acid、1,9-tetradecadiene、octacosane、tricosane和（9Z）-hexadecenoic acid methyl ester,这些化合物诱导捕食器官活性还需进一步验证。

关键词：细菌捕食线虫真菌捕食器官代谢产物浅黄色假单胞杆菌

诱导少孢节丛孢形成捕食器官的细菌的分离及机制研究

在线全文

同方学位论文库

学校读者我要写书评

暂无评论

诱导少孢节丛孢形成捕食器官的细菌的分离及机制研究

作者：马名川云南大学

学位级别：硕士

本研究从土壤中分离并鉴定能诱导少孢节丛孢形成捕食器官的细菌,初步探讨细菌诱导其形成捕食器官的机制;分离并鉴定与野生型少孢节丛孢伴生的能诱导其形成捕食器官的细菌。总结实验结果如下： 1、从土壤中分离筛选到14株能诱导少孢节丛... 详细信息

本研究从土壤中分离并鉴定能诱导少孢节丛孢形成捕食器官的细菌,初步探讨细菌诱导其形成捕食器官的机制;分离并鉴定与野生型少孢节丛孢伴生的能诱导其形成捕食器官的细菌。总结实验结果如下： 1、从土壤中分离筛选到14株能诱导少孢节丛孢产生捕食器官的细菌,通过16S rRNA鉴定,这14株细菌分别属于：Lysobacter(溶杆菌属)1株、Variovorax(贪噬菌属)1株、Stenotrophomonas(寡养单胞菌属)1株、Chryseobacterium (金黄杆菌属)1株、Bacillus(芽孢杆菌属)4株、Sphingomonas(鞘氨醇单胞菌属)1株、Kocuria(库克菌属)1株、Pseudoxanthomonas假黄单胞菌属)2株、Arthrobacter(节杆菌属)1株、Ochrobactrum(苍白杆菌属)1株,其中Lysobacter(溶杆菌属)、Variovorax (贪噬菌属)、Stenotrophomonas(寡养单胞菌属)、Chryseobacterium(金黄杆菌属)表现出较强活性。并且,只有当菌体存在时才能诱导少孢形成捕食器官,细菌的发酵液存在时能加速或增加捕食器官的形成。 2、初步研究Chryseobacterium sp. TFB(金黄杆菌属)诱导少孢节丛孢形成捕食器官的机制：少孢节丛孢与细菌细胞共培养时,其分生孢子会产生菌丝捕器(MT)和孢子捕器(CT);少孢节丛孢与细菌发酵液共培养时,其分生孢子不会产生捕器。当少孢节丛孢与细菌细胞和细菌发酵液共培养时,则其分生孢子会产生大量的MT和CT,并且随着发酵液的浓度增加,CT的数量会随之增加,但其分生孢子的萌发会受到一定程度抑制。通过扫描电子显微镜观察与细菌共培养的少孢节丛孢,结果表明活性细菌附着于少孢节丛孢菌丝表面是捕食器官形成的先决条件,而细菌的发酵液可以促进细菌附着于菌丝表面。此外,随着共培养基中营养的增加,捕食器官的形成数量会随之减少,因此贫营养可以加大捕食器官形成的数量。 3、不同种的捕食线虫真菌与Chryseobacterium sp. TFB的细胞和细菌发酵液进行共培养时,都能被诱导形成捕食器官,但是它们形成捕食器官的能力存在着一定的差异。 4、从野生型少孢节丛孢表面分离筛选到35株可以诱导其产生捕器的活性细菌。通过16S rRNA鉴定,35株活性菌株分别属于：Stenotrophomonas(寡养单胞菌)10株、Agrobacterium (农杆菌)8株、Achromobacter(无色杆菌)13株、Zhihengliuella(刘志恒菌)3株、Sphingobium(鞘氨醇单胞菌)1株。并且,只有当菌体存在时才能诱导少孢形成捕食器官,细菌的发酵液存在时能加速或增加捕食器官的形成。 5、利用电子显微镜(SEM)和荧光原位杂交(FISH)技术,发现Agrobacterium(农杆菌)存在于野生型少孢节丛孢的菌丝表面。本论文的创新性体现为： 1、首次报道细菌可以诱导少孢节丛孢产生捕食器官,而细菌附着于其菌丝表面是捕食器官形成的先决条件;2、首次发现野生型少孢节丛孢菌丝表面存在能使其形成捕食器官的伴生细菌。

关键词：捕食线虫真菌少孢节丛孢捕食器官伴生细菌

GDH2基因在线虫提取液诱导少孢节丛孢产氨和产捕食器官的作用

在线全文

同方学位论文库

学校读者我要写书评

暂无评论

GDH2基因在线虫提取液诱导少孢节丛孢产氨和产捕食器官的作用

作者：朱宝林云南大学

学位级别：硕士

全球每年因为线虫使经济作物减产而造成的经济损失重大,食线虫真菌是线虫的自然天敌,因种类多分布广而受到广泛关注。少孢节丛孢是捕食线虫真菌的模式种,它在形成三维菌网后捕杀线虫,因此捕食器官的形成对其生活史的转变非常重要。很多... 详细信息

全球每年因为线虫使经济作物减产而造成的经济损失重大,食线虫真菌是线虫的自然天敌,因种类多分布广而受到广泛关注。少孢节丛孢是捕食线虫真菌的模式种,它在形成三维菌网后捕杀线虫,因此捕食器官的形成对其生活史的转变非常重要。很多因素都被报道能诱导少孢节丛孢产生捕食器官,如线虫、线虫提取液、细菌、氨基酸、小肽等。文献及我们的前期研究表明在线虫提取液诱导少孢节丛孢形成捕食器官过程中产生了氨,暗示氨气参与了捕食器官的形成。在其他一些致病真菌中报道致病菌的形态发生变化的过程中分泌氨,且结果显示氨与该真菌的形态变化和致病性相关。文献报道与氨相关的基因有AreA、Mep、PacC、GDH2、GS1、amet等基因,其中GDH2基因(编码谷氨酸脱氢酶)和GS1基因(编码谷氨酰胺合成酶)与氨的产生相关,amet基因(编码氨转运蛋白)与氨的分泌有关。本文研究GDH2、GS1、amet三个基因在线虫提取液(NE)诱导少孢节孢分泌氨和产捕食器官中的作用。用同源重组方法敲除GDH2、GS1、amet三个基因,只得到△GDH2敲除株。我们比较了少孢节丛孢的野生型(WT)和△GDH2敲除株在NE诱导条件下产捕食器官数量、pH荧光染色、捕杀线虫能力、产孢形态和数量、生长速率、抗逆性生长、HPLC代谢产物等方面的差异。实验结果显示△GDH2敲除株比WT产捕食器官能力下降90%,且分泌到培养基中的氨浓度也降低了50%,当加入外源氨之后,捕食器官的数量恢复13%,结果暗示了NE与少孢节丛孢共培养时产生的氨与少孢节丛孢捕食器官的形成有一定的关联。用pH荧光染色剂BCECF/AM对菌丝染色后,荧光显微镜检测发现,△GDH2敲除株的菌丝内的荧光比WT的暗,说明△GDH2敲除株的菌丝内pH比WT的低,结果暗示菌丝内的碱化与捕食器官的形成可能有关系。与WT相比,△GDH2敲除株的产孢能力下降了66.4%,结果表明GDH2基因在产孢子过程中可能发挥重要作用。△GDH2敲除株与WT在生长速率、捕杀线虫能力方面均无差异。在含有0.01%SDS、0.02%SDS、0.1 M NaCl、0.2 M NaCl、5 mM HO、10 mM HO、15 mM HO的培养基中WT和△GDH2敲除株抗逆性没有差异,但在0.03%SDS、0.3 M NaCl的培养基中,△GDH2敲除株的抗逆性较WT减弱。经HPLC检测△GDH2敲除株与WT的代谢产物,实验结果表明存在明显差异,结果暗示GDH2基因在少孢节丛孢代谢过程中起着一定作用。文献报道少孢节丛孢能分泌挥发性物质吸引线虫,从而增加捕杀线虫的机率。我们用琼脂糖凝胶平板法进行氨水诱吸秀丽隐杆线虫实验,实验结果表明氨水浓度在10和10之间均可吸引秀丽隐杆线虫(吸引指数>0.2),结果表明氨可以吸引秀丽隐杆线虫。本文的创新点:1.结果暗示GDH2基因在NE诱导少孢节丛孢产氨、产捕食器官以及产孢过程中起着重要作用。2.证实了氨可以吸引线虫,可能可以增加少孢节丛孢捕杀线虫的能力。

关键词：少孢节丛孢氨捕食器官 GDH2

在线全文

同方学位论文库

学校读者我要写书评

暂无评论

寡孢节丛孢捕食器官形成机制的初步研究

寡孢节丛孢捕食器官形成机制的初步研究

寡孢节丛孢的比较基因组和捕食器官形成机制研究

第四届全国微生物基因组学学术研讨会

作者：杨金奎梁连铭张克勤云南大学生物资源保护与利用国家重点实验室培育基地和西南微生物多样性教育部重点实验室

＜正＞捕食线虫真菌是一类重要的微生物类群,它们能通过菌丝特化形成多种类型的捕食器官捕捉线虫。寡孢节丛孢是研究捕食线虫真菌和线虫相互作用的模式真菌,它在线虫的诱导下能形成三维菌网捕捉线虫。在前期的研究中,基于寡孢节丛孢的... 详细信息

＜正＞捕食线虫真菌是一类重要的微生物类群,它们能通过菌丝特化形成多种类型的捕食器官捕捉线虫。寡孢节丛孢是研究捕食线虫真菌和线虫相互作用的模式真菌,它在线虫的诱导下能形成三维菌网捕捉线虫。在前期的研究中,基于寡孢节丛孢的基因组、蛋白质组学和Real time PCR分析结果,我们首次提出了寡孢节丛孢捕器形成的假说。寡孢节丛孢识别线虫,并通过信号转导系统把胞外信号传递到胞内进一步激活下游的生物学过程。这些生物学过程主要包括:细胞增殖和细胞隔膜形成的加快促进了细胞壁的生物合成和细胞骨架的装配;甘油的合成和

关键词：捕食线虫真菌寡孢节丛孢捕食器官形成机制

来源： cnki会议评论

在线全文

cnki会议

学校读者我要写书评

暂无评论

寡孢节丛孢的比较基因组和捕食器官形成机制研究

一种诱导和观察捕食线虫真菌捕食器官的简易方法

中国菌物学会第五届会员代表大会暨2011年学术年会

作者：杨金奎季星来邹成钢梁连铭张克勤云南大学生物资源保护与利用国家重点实验室培育基地和西南微生物多样性教育部重点实验室

捕食线虫真菌是一类重要的微生物类群,它们能通过菌丝特化形成多种类型的捕食器官捕捉线虫。寡孢节丛孢是研究捕食线虫真菌和线虫相互作用的模式真菌,它在线虫的诱导下能形成三维菌网捕捉线虫。在前期的研究中,我们测定了寡孢节丛孢的... 详细信息

捕食线虫真菌是一类重要的微生物类群,它们能通过菌丝特化形成多种类型的捕食器官捕捉线虫。寡孢节丛孢是研究捕食线虫真菌和线虫相互作用的模式真菌,它在线虫的诱导下能形成三维菌网捕捉线虫。在前期的研究中,我们测定了寡孢节丛孢的全基因组序列,通过和其它子囊菌（包括病原真菌和非病原真菌）的基因组进行比较发现,寡孢节丛孢的基因组中含有大量的特有基因（53.64%）,它和病原真菌的直系同源基因数目（961）远远多于与非病原真菌的直系同源基因（112）。同时,在PHI-base数据库中鉴定得到398个致病相关基因。蛋白质组学和Real time PCR分析结果表明,在线虫诱导的条件下,参与蛋白质翻译、氨基酸代谢、碳水化合物代谢、细胞壁合成的蛋白表达量显著上调,说明在捕食器官形成过程中真菌的代谢过程非常活跃。同时多种信号途径和参与能量代谢、细胞壁合成、粘性蛋白合成、甘油合成、过氧化物酶体蛋白合成和细胞分化等生物学途径被激活,基于以上的研究结果我们首次从分子水平提出了寡孢节丛孢捕食器官形成的机制和模式。为了进一步证实该机制,我们对参与能量代谢的乙醛酸循环的关键酶苹果酸合成酶和部分过氧化物酶体蛋白编码基因进行了敲除研究,实验结果表明,这些基因的敲除对寡孢节丛孢捕食器官形成的数量和侵染线虫的能力均有一定的影响。研究结果为进一步阐明捕食线虫真菌的侵染线虫的机制奠定了关键的基础。

关键词：寡孢节丛孢比较基因组捕食器官乙醛酸循环过氧化物酶体蛋白侵染活性

来源： cnki会议评论

在线全文

cnki会议

学校读者我要写书评

暂无评论

吉林农业大学学报 1998年第S1期20卷 130-130页

作者：雷丽萍李天飞夏振远刘杏忠高仁恒云南省烟草科学研究所玉溪653100 中国农科院生物防治研究所北京100081

捕食器官是捕食线虫真菌分类鉴定和生防应用的重要依据,常规鉴定捕食线虫真菌的方法是在原始分离培养中直接观察的测量捕食器官和孢子,如果没有捕食器官或缺少其他特征不能鉴定时,只有挑取孢子到营养培养基上获得纯培养后再进一步鉴定.... 详细信息

捕食器官是捕食线虫真菌分类鉴定和生防应用的重要依据,常规鉴定捕食线虫真菌的方法是在原始分离培养中直接观察的测量捕食器官和孢子,如果没有捕食器官或缺少其他特征不能鉴定时,只有挑取孢子到营养培养基上获得纯培养后再进一步鉴定.如何诱导纯培养物捕食器官的产生是很关键的一步,在我们对捕食线虫真菌研究的过程中,对常规诱导捕食器官的方法进行了改进,现简报如下:供试菌种及捕食器官:Arthrobotrys conoids(粘网);***(收缩性环);***(粘网);Monacrosporium cionopagum(粘性分枝); ***(粘网);***-latum(粘网).诱饵线虫:将诱饵线虫 Panagrellus redivivus接种在三角瓶中燕麦片培养基(燕麦片:水约等于3:2)上培养1周后,用无菌水洗出线虫,用离心机水洗3次待用.捕食器官诱导方法:将待鉴定的菌株(或直接从原始分离培养皿中挑取孢子)接种到马铃薯葡萄糖琼脂培养基(PDA)平板中,在25℃下培养,待菌落约1cm时,在菌落边缘切除约1.5cm×1.5cm的琼脂块后,加入诱饵线虫约5000条,室温下培养 2～3 d直接镜检,同时用常规方法在水琼脂培养基(WA)和CMA平板上作对照.镜检结果表明,改进后的方法可以诱导出所有供试菌株的捕食器官,即粘网、粘性分枝及收缩性环,与在WA和CMA平板上诱导捕食器?

关键词：捕食线虫真菌捕食器官观察

在线全文

学校读者我要写书评

暂无评论

捕食线虫真菌自发产生捕食器官的菌株筛选

云南大学学报（自然科学版） 2000年第3期22卷 227-231页

作者：毕廷菊莫明和张克勤云南大学云南省工业微生物发酵工程重点实验室云南昆明650091

在Czapek ,PDA ,CMA ,WA四种培养基上 ,从 2 1株捕食线虫真菌中筛选到 7株在无线虫诱导条件下能自发形成捕食器官的真菌 ,这些菌株是 :J8- 1(***) ,MW 17- 2 (A .ja vanica) ,J31- 1(A .vermicola) ,J34 - 1(Dactylellaleptospora) ,XZ9... 详细信息

在Czapek ,PDA ,CMA ,WA四种培养基上 ,从 2 1株捕食线虫真菌中筛选到 7株在无线虫诱导条件下能自发形成捕食器官的真菌 ,这些菌株是 :J8- 1(***) ,MW 17- 2 (A .ja vanica) ,J31- 1(A .vermicola) ,J34 - 1(Dactylellaleptospora) ,XZ9- 2 ,XS2 - 2 ,O1- 1(A .dactyloides) .三维菌网在营养贫瘠的培养基上容易产生 ;粘球和收缩环的形成与培养基营养丰富度无相关性 .对XZ9-

关键词：捕食线虫真菌捕食器官节丛孢属形成机制

嗜线虫节丛孢(Arthrobotrys flagrans)用于生物防治动物寄生线虫的研究进展

在线全文

学校读者我要写书评

暂无评论

中国预防兽医学报 2023年第9期45卷 979-984页

作者：王波波黑钰王逢会田淑月李欣蔡葵蒸延安大学医学院陕西延安716000 延安市动物及人兽共患寄生虫病重点实验室陕西延安716000 延安市真菌资源开发与生物防治重点实验室陕西延安716000

捕食线虫性真菌Arthrobotrys flagrans首次由Duddington于1948年从腐烂的蔬菜里发现[1],并将该菌命名为Trichothecium flagrans。Cooke于1969年重新定义后为该种建立了一个新属(Duddingtonia属)[2],称为Duddingtonia flagrans,是该属唯一的种。Scholler等于1999年通过分析捕食线虫性真菌的18S r DNA和内部转录间隔区(ITS)的基因序列,认为捕食线虫性真菌的捕食器官类型在其属的分类上有重要意义。

关键词：捕食线虫性真菌生物防治动物寄生线虫 18S 节丛孢捕食器官